Methoden zum Nachweis der Immunfunktion von Tieren

In-vitro-Testmethoden für Späthaar-allergische Reaktionen Hauttests und die Auslösung einer Kontaktallergie sind zwei gängige Methoden zur Erkennung von Späthaar-allergischen Reaktionen (DTH).

Bei Hauttests wurde eine Reaktion auf Antigene induziert, die den Patienten empfindlich gemacht hatten, und Kontaktallergie war die Fähigkeit, die Fähigkeit des Empfängers zu testen, auf Substanzen zu reagieren, die noch nie exponiert waren.. 1. Hauttest mit Hauttestdiagnose DTH, häufig verwendete Antigene haben TB-Bakterien, reine Proteinderivate (PPD), Mumpsvirus, Candidadein usw., bei menschlichen Tests in die Haut des Unterarms Injektion einer kleinen Menge löslichen Antigens, 24 bis 48 klein, messen Sie die Größe roter und geschwollener harter Knoten. Ein harter Knotendurchmesser von mehr als 10 mm wird als positiv angesehen. Es zeigt, dass das Subjekt über ein gewisses Maß an zellulärer Immunität gegen den Erreger verfügt. Wenn der Hauttest nicht reagiert, kann eine höhere Antigenkonzentration verwendet werden. Wiederholter Test. Wenn immer noch keine negative Reaktion ausfällt, muss ein technischer Fehler des Hauttests ausgeschlossen werden. Es kann auch sein, dass das Subjekt noch nie diesem Antigen ausgesetzt war, es kann auch an einem Mangel an zellulärer Immunfunktion oder an einem Mangel an zellulärer Immunfunktion liegen.

oder nicht-reaktiv aufgrund schwerer Infektionen (Masern, chronische diffuse Tuberkulose). 2. Bei Kontaktallergien kommt es häufig zu niedermolekularen Verbindungen wie Dinitrolchlorbenzol (DNCB), die eine Kontaktallergie auslösen. Verbindungen binden an Hautproteine, um DTH-Reaktionen auszulösen. In Tierversuchen erscheint die Haut positiv, wenn die Haut nach 7 bis 10 Tagen Stimulation nach dem ersten Auftragen des DNCB auf die Haut positiv erscheint.

Dieses Experiment wird von Menschen nicht mehr genutzt.

In-vitro-Nachweismethode der Zellimmunität In-vitro-Nachweis der Anzahl und Funktion von Lymphozyten, leichter zu entnehmende Blutproben, zunächst müssen Lymphozyten isoliert oder gereinigt werden, im Allgemeinen unter Verwendung von Glutalyson-panphotonischem Glutamin mit einem Anteil von 1,077 Lymphozyten-Schichtungsflüssigkeit, wenn das Blut auf der Oberseite der Lymphozyten geschichtete Flüssigkeitszentrifugation überlappt, aufgrund roter Blutkörperchen (1,092), polymorphe nukleare weiße Blutkörperchen (überwiegend 1.090), die Anteile der Lymphozyten (1.070) sind unterschiedlich und voneinander getrennt. Lymphozyten und Monozyten bilden eine dünne Schicht an der Schnittstelle von Plasma und Schichtung.

Teilen Sie diese dünne Zellschicht, von der 80 % Lymphozyten, 20 % Mononukleose, 80 % Lymphozyten und 4 % bis 10 % B-Zellen ausmachten, sorgfältig als Nicht--DT-, Nicht-{6}B-Zellen auf. ⑴ E--Kranz: Die Oberfläche menschlicher T-Zellen verfügt über einen SRBC-Rezeptor (CD2), der an SRBC binden kann, um eine Rosenring-ähnliche Struktur zu bilden. Die RBM-Suspension und SRBC werden durch eine geschichtete Flüssigkeitsmischung in einer ausgewogenen Salzlösung isoliert, die Serum enthält, 5 bis 10 Minuten lang bei 37 °C kultiviert, über Nacht bei 4 °C gehalten und die Zellsuspension gezählt. Etwa 70 bis 80 % der Lymphozyten im peripheren Blut bilden sich Kränze oder T-Zellen.

Derzeit wird diese Methode verwendet, um T-Zellen zu isolieren, ohne dass eine T--Zellzählung durchgeführt werden muss. (2) Zählen von T-Zellen mit monoklonalen Antikörpern: Das menschliche PBM wird in drei gleiche Teile geteilt, die Prä-Antikörper von Mäusen gegen -menschliches CD3, CD4 und CD8 werden mit den Zellen kombiniert, und dann wird der zweite Antikörper des Kaninchen-Anti-Maus-IgG, markiert durch FITC, für die indirekte Immunfluoreszenzfärbung verwendet. In den Ergebnissen von Fluoreszenzmikroskop- oder Durchflusszytometer-Testergebnissen werden in PBM cd3-Antikörper fluoreszierend gefärbt Zellen, die als CD3-Plus-Zellen oder Gesamt-T-Zellen bezeichnet werden. Normale Menschen in PBM-T-Zellen machten 70 bis 80 % aus. Die Summe der CD4-Plus-Zellen und CD8-Zellen bei normalen Menschen sollte mit der Anzahl der CD3-Zellen übereinstimmen. Das Verhältnis von CD4-plus-Zellen zu CD8-Zellen beträgt bei normalen Menschen etwa 2/1, während das Verhältnis bei AIDS-Patienten weniger als 1,7 beträgt.